Регуляторное действие пероксидных анион-радикалов на процессы остеогенезиса и костного ремоделирования: обзор литературы

Представлен анализ научных публикаций о регуляторном влиянии пероксидных анион-радикалов и электронной активации организма на функцию остеогенеза и сопряженные системы организма по следующим источникам информации: база данных Scopus, MEDLINE, Web of Science, eLibrary.ru, Google Academy — на наличие рецензируемых оригинальных и обзорных публикаций по ключевым словам: остеогенез (osteogenesis), костно-мышечная система (musculoskeletal system), реоксигенация (reoxygenation), гормональные регуляторы (hormonal regulators), электрон-донорная активность (electron-donor activity), фаза ассоциированной воды (associated water phase), реабилитация (rehabilitation), на основании которых были сформированы поисковые фразы по теме исследования. Основываясь на ряде доказательных научных исследований по регуляторному влиянию пероксидных анион-радикалов и электронной активации на биологические процессы (изменение функционального состояния печени, гематологические показатели, макро- и микроэлементный состав жидких сред и органов животных, течение репаративных процессов в поврежденных тканях), предложен биофизический механизм системного гомеостатического действия кислородных анион-радикалов. Данный механизм заключается в антигипоксическом и детоксицирующем действии при реоксигенации ишемизированных тканей, в повышении пролиферативной активности и сдвиге регуляторов остеогенеза (система sRANKL-OPG) в сторону остеопротегерина. Одновременно происходят процессы связывания внутриклеточного свободного кальция и микроэлементов в остеобластах, активации макрофагальной реакции, неоангиогенеза и восстановления миелоидной ткани в области поломки кости. Показано, что использование мицеллярного механоактивированного углекислого кальция как источника формирования пероксидных анион-радикалов в водной среде приводит к снижению редокс-состояния и стабилизации рН клеток, активации митохондриальной активности, сопровождаемой интенсификацией обмена веществ, включая обмен микро- и макроэлементов, улучшению функций системы антиоксидантной защиты и неспецифического иммунитета организма, стабилизации физиолого-биохимических показателей и функционального состояния внутренних органов.

1. Цискарашвили А. В., Родионова С. С., Миронов С. П., Бухтин К. М., Горбатюк Д. С., Тараскин А. Ю. Метаболические нарушения костной ткани у пациентов с переломами длинных костей , осложнё нных хроническим остеомиелитом. Гений ортопедии. 2019; 25 (2): 149–155. https://doi.org/10.18019/1028-4427-2019-25-2-149-155

2. Холхужаев Ф. И., Орипов Ф. С., Уринбаев П. У. Некоторые показатели частоты сочетания переломов костей с заболеваниями органов желудочно-кишечного тракта. Вопр. науки и образования. 2021; 8 (133): 4–9.

3. Поздеев А. П., Белоусова Е. А., Сосненко О. Н. Современное представление о деформациях костей предплечья у детей на фоне экзостозной хондродисплазии (обзор литературы). Гений ортопедии. 2020; 2: 248–253. https://doi.org/10.18019/1028-4427-2020-26-2-248-253

4. Мироманов А. М., Миронова О. Б., Гусев К. А., Доржеев В. В., Куклина Е. Ю., Усков С. А., Забелло Т. В. Заболевания костей и суставов: Учеб. пособие. Чита: Издательство ЧГМА; 2021.

5. Yaşar E., Adigüzel E., Arslan M., Matthews D. J. Basics of bone metabolism and osteoporosis in common pediatric neuromuscular disabilities. Europ. J. Paediat. Neurol. 2018; 22 (1): 17–26. https://doi.org/10.1016/j.ejpn.2017.08.001

6. Мальцев С. В., Мансурова Г. Ш. Снижение минеральной плотности кости у детей и подростков: причины, частота развития, лечение. Вопр. современной педиат. 2015; 5: 573–578. https://doi.org/10.15690/vsp.v1415.1442

7. Марченкова Л. А., Фесюн А. Д., Герасименко М. Ю. Исследование выраженности психоэмоциональных нарушений у пациентов с остеопорозными переломами позвонков и влияющих на них факторов. Вопр. курортол., физиотер. и ЛФК. 2021; 98 (3): 18–28. https://doi.org/10.17116/kurort20219803118

8. Varga C. On the proper study design applicable to experimental balneology. Int. J. Biometeorol. 2016; 60: 1307–1309. https://doi.org/10.1007/s00484-015-1113-8

9. Hanzel A., Horváth K., Molics B., Berényi K., Németh B., Varga C. Clinical improvement of patients with osteoarthritis using thermal/ mineral water at Szigetvár–results of a randomized double blind controlled study. Int. J. Biometeorol. 2018; 62: 253–259. https://doi.org/10.1007/s00484-017-1446-6

10. Hanzel A., Berényi K., Horváth K., Szendi K., Németh B., Varga C. Evidence for the therapeutic effect of the organic content in Szigetvár thermal water on osteoarthritis: a double-blind, randomized, controlled clinical trial. Int. J. Biometeorol. 2019; https://doi.org/10.1007/s00484-019-01676-3

11. Daish C., Blanchard R., Fox K. et al. The Application of Pulsed Electromagnetic Fields (PEMFs) for Bone Fracture Repair: Past and Perspective Findings. Ann. Biomed. Engineer. 2018; 46: 525–542. https://doi.org/10.1007/s10439-018-1982-1

12. Рахманин Ю. А., Яковлева Г. В., Иксанова Т. И. и др. Роль воды организма в этиологии хронических неинфекционных заболеваний (обзор литературы). Гигиена и санитария. 2021; 100 (6): 584–593. https://doi.org/10.47470/0016-9900-2021-100-6-584-593

13. Treacy J. Drinking Water Treatment and Challenges in Developing Countries. 2019; https://doi.org/10.5772/intechopen.80780

14. Стехин А. А., Яковлева Г. В. Структурированная вода: Нелинейные эффекты. М.: ЛКИ; 2008; 320 с.

15. Иванов В. И., Савостикова О. Н., Алексеева А. В., Пьянзина И. П. и др. Биофизические аспекты биологической активности структурно-напряженного кальция углекислого в мицеллярной форме. Гигиена и санитария. 2013; 92 (6): 30–33.

16. Ярмаркин Д. А., Прохасько Л. С., Мазаев А. Н. и др. Кавитационные технологии в пищевой промышленности. Молодой ученый. 2014; 8 (67): 312–315/

17. Yuly J. L., Lubner C. E., Zhang P., Beratan D. N., Peters J. W. Electron bifurcation: progress and grand challenges. Chem. Communicat. J. 2019; 55: 11823–11832. https://doi.org/10.1039/C9CC05611D

18. Kayastha K., Vitt S., Buckel W., Ermler U. Flavins in the electron bifurcation process. Arch. Biochem. Biophys. 2021; 701: 108796. https://doi.org/10.1016/j.abb.2021.108796

19. Марасанов А. В., Карасев А. К., Иксанова Т. И., Шовкопляс Ю. А., Гукасов В. М. и др. Обменные электронные взаимодействия как основа биофизических регуляторных процессов. Мед. и высокие технол. 2019; 1: 5–15.

20. Поллак Д. Четвертая фаза воды. М.: ДМК Пресс; 2021; 424 с.

21. Chang R., Choi D., Kim M. H., Park Y. Tuning Crystal Polymorphisms and Structural Investigation of Precipitated Calcium Carbonates for CO2 Mineralization. Amer. Chem. Soc. Sustainable Chem. Engineer. 2017; 5(2): 1659–1667. https://doi.org/10.1021/acssuschemeng.6b02411

22. Toffolo M. B., Ricci G., Caneve L. et al. Luminescence reveals variations in local structural order of calcium carbonate polymorphs formed by different mechanisms. Scientif. Rep. 2019; 9: 16170. https://doi.org/10.1038/s41598-019-52587-7

23. Costa S. N., Freire V. N., Caetano E. W.S., Maia F. F., Barboza C. A., Fulco U. L., Albuquerque E. L. DFT Calculations with van der Waals Interactions of Hydrated Calcium Carbonate Crystals CaCO3·(H2O, 6H2O): Structural, Electronic, Optical, and Vibrational Properties. J. Phys. Chem. A. 2016; 120 (28): 5752–5765. https://doi.org/10.1021/acs.jpca.6b05436

24. Carteret C.,Dandeu A., Moussaoui S., Muhr H., Humbert B., Plasari E. Polymorphism Studied by Lattice Phonon Raman Spectroscopy and Statistical Mixture Analysis Method. Application to Calcium Carbonate Polymorphs during Batch Crystallization. Crystal Growth Des. 2009; 9 (2): 807–812. https://doi.org/10.1021/cg800368u

25. Стехин А. А., Яковлева Г. В. Квантовое поведение воды: свойства электронной подсистемы ассоциатов воды. Электронный дефицит как фактор риска здоровью. М.: ЛЕНАНД; 2019; 304 с. [Stekhin A. A., Yakovleva G. V. Quantum behavior of water: Properties of the electronic subsystem of water associates. Electronic deficiency as a health risk factor. M.: LENAND; 2019; 304 p. (in russ.)].

26. Рахманин Ю. А., Стехин А. А., Яковлева Г. В. Биофизика воды: квантовая нелокальность в технологиях водоподготовки; регуляторная роль ассоциированной воды в клеточном метаболизме; нормирование биоэнергетической активности питьевой воды. М.: ЛЕНАНД; 2016.

27. Каркищенко Н. Н. Нанобезопасность: новые подходы к оценке рисков и токсичности наноматериалов. Биомедицина. 2009; 55 (1): 5–27.

28. Huang H.-J., Hsu Y.-H., Liao C.-T., Lin Y.-F., Chiu H.-W. Current Strategies in Assessment of Nanotoxicity: Alternatives to In Vivo Animal Testing. Int. J. Molec. Sci. 2021; 22 (8): 4216. https://doi.org/10.3390/ijms22084216

29. Бородюк Н. Р. Кровь — живое существо. Биоэнергетические механизмы приспособительных реакций. М.: Глобус; 1999; 214 с.

30. Иксанова Т. И., Михайлова Р. И., Загайнова А. В. и др. Влияние системного гомеостатического регулятора — ассоциатов пероксидных анион-радикалов на активность микроорганизмов. Гигиена и санитария. 2022; 101 (4). https://doi.org/10.47470/0016-9900-2022-101-4

31. Борисенко A. B., Ямскова В. П., Благодатских К. В., Березин Б. Б., Краюхина М. А., Ямсков И. A. Идентификация регуляторных белков, биологически активных в сверхмалых дозах, и исследование их физико-химических свойств. Биол. мембраны. 2007; 24 (3): 227–233.

32. Каргатова Т. В. Оценка выживаемости трансгенного штамма Escherichia coli Z905/pPHL7 в водных микрокосмах: Дис. канд. биол. наук. Красноярск; 2005; 144 с. [Kargatova T. V. Assessment of survival of transgenic strain Escherichia coli Z905/pPHL7 in aquatic microcosms: Diss. Cand. Sci. (Biol.). Krasnoyarsk, 2005; 144 p. (in russ.)].

33. Соболев A. Д., Исмаилов А. Д., Данилов B. C. Кинетика биолюминесценции в реакции бактериальной люциферазы с различными алифатическими альдегидами. Биохимия. 1989; 54 (2): 2061–2065.

34. Sazanov LA. The mechanism of coupling between electron transfer and proton translocation in respiratory complex I. J. Bioenerg. Biomembr. 2014; 46 (4): 247–53. https://doi.org/10.1007/s10863-014-9554-z

35. Иксанова Т. И., Каменецкая Д. Б., Яковлева Г. В. и др. Зависимость биологической активности воды от концентрации системного гомеостатического регулятора — ассоциатов пероксидных анион-радикалов. Междунар. журн. прикладных и фундаментальных исследований. 2019; 5: 26–29.

36. Pronko K., Zemskov V. et al. Regulatory function of macroscopic states of electrons in cell metabolism. Clin. Pract. 2018; 15 (3): 707–715.

37. Кормош Н. Г. Физиологическая роль активных форм кислорода на клеточном уровне и организма в целом — взгляд клинициста. Ч. 2. Рос. биотер. журн. 2012; 1.

38. Pronko K., Zemskov V. et al. Water as the main regulator of intracellular processes. Clin. Pract. 2018; 15 (5): 831–845.

39. Линг Г. Физическая теория живой клетки: незамеченная революция. СПб.: Наука; 2008; 376 с. [Ling G. The physical theory of the living cell: an Unnoticed Revolution. St. Petersburg: Nauka; 2008; 376 p. (in russ.)].

40. Bratsun D., Volfson D., Hasty J., Tsimring L. Delay-induced stochastic oscillations in gene regulation. Proceed. Nat. Acad. Sci. 2005; 102 (41): 14593–14598. https://doi.org/10.1073/pnas.0503858102

41. Gems D., Partridge L. Genetics of longevity in model organisms: debates and paradigm shifts. Ann. Rev. Physiol. 2013; 75: 621–644. https://doi.org/10.1146/annurev-physiol-030212-183712

42. Van Q. N., Prakash P., Shrestha R. et al. RAS Nanoclusters: Dynamic Signaling Platforms Amenable to Therapeutic Intervention. Biomolecules. 2021; 11 (3): 377. https://doi.org/10.3390/biom11030377

43. Kabekkodu S. P., Shukla V., Varghese V. K., D′ Souza J., Chakrabarty S., Satyamoorthy K. Clustered miRNAs and their role in biological functions and diseases. Biol. Rev. 2018; 93: 1955–1986. https://doi.org/10.1111/brv.12428

44. Macauley M., Jenkins A., Davies R. Chapter 4 — The Regulation of Gene Expression by Operons and the Local Modeling Framework. Algebraic and Combinatorial Computational Biology. Academic Press. 2019; 89–146. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-814066-6.00004-0

45. Foyer C. H., Wilson M. H., Wright M. H. Redox regulation of cell proliferation: Bioinformatics and redox proteomics approaches to identify redox-sensitive cell cycle regulators. Free Radical Biol. Med. 2018; 122: 137–149. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2018.03.047

46. Menon S., Goswami P. A. Redox cycle within the cell cycle: ring in the old with the new. Oncogene. 2007; 26: 1101–1109. https://doi.org/10.1038/sj.onc.1209895

47. Торшков А. А. Механизмы повышения продуктивности цыплят-бройлеров при использовании Алексанат Зоо. Учен. записки КГАВМ им. Н. Э. Баумана. 2014; 1.

48. Шкуратова И. А., Соколова О. В., Ряпосова М. В. Способ выращивания телят: Патент РФ № 2562943/18.11.2013.

49. Верещак Н., Красноперов А., Опарина О. Влияние минеральной добавки «Алексанат Зоо» на иммуногематологические показатели крови телят. Ветеринария сельскохоз. животных. 2017; 7: 37358.

50. Зацепина О. В., Пьянзина И. П. и др. Особенности изменений электрохимических параметров воды, активированной структурно-напряженным карбонатом кальция в мицеллярной форме. Гигиена и санитария. 2013; 92 (50): 37–40.

51. Яковлева Г. В., Иксанова Т. И., Каменецкая Д. Б. и др. Системное гомеостатическое действие пероксидных ассоциатов воды // В сб.: Материалы I Национального конгресса с международным участием по экологии человека, гигиене и медицине окружающей среды «Сысинские чтения — 2020». М.; 2020: 337–341.

52. Pronko K., Zemskov V. et al. Quantum biophysics of water. Clin. Prac. 2018; 15 (3): 663–670.

53. Паймерова И. С. Применение комплекса биоэлементов в мицеллярной форме отдельно и в сочетании с биокремнийорганической добавкой при выращивании поросят: Автореф. дис. канд. биол. наук. Дубровицы; 2011.

54. Lehmann-Werman R., Magenheim J., Moss J. et al. Monitoring liver damage using hepatocyte-specific methylation markers in cell-free circulating DNA. J. clin. investig. Insight. 2018; 3 (12): e120687. https://doi.org/doi:10.1172/jci.insight.120687

55. Parmar K., Singh G., Singh G., Gupta G., Pathak T. Evaluation of De Ritis ratio in liver-associated diseases. Int. J. Med. Sci. Publ. Hlth. 2016; 5 (9): 1. https://doi.org/10.5455/ijmsph.2016.24122015322

56. Wilson D. S., Hirosue S., Raczy M. M. et al. Antigens reversibly conjugated to a polymeric glyco-adjuvant induce protective humoral and cellular immunity. Nature Materials. 2019; 18: 175–185. https://doi.org/10.1038/s41563-018-0256-5

57. Tyurin V. G., Semenov V. G., Kozak S. S., Ivanov N. G., Kochish O. I., Tikhonov G. P., Lyagina E. E. Nonspecific resistance and specific immunogenesis of the birg′s body against the background of biostimulation // В сб.: Перспективы развития аграрных наук: Материалы Международной научно-практической конференции. М., 2019: 48–50.

58. Kishimoto S., Maruhashi T., Kajikawa M. et al. Hematocrit, hemoglobin and red blood cells are associated with vascular function and vascular structure in men. Scientif. Reports. 2020; 10: 11467. https://doi.org/10.1038/s41598-020-68319-1

59. Razzaque M. S. Magnesium: Are We Consuming Enough? Nutrients. 2018; 10 (12): 1863. https://doi.org/10.3390/nu10121863

60. Nazarenko A., Zaiko O., Korotkevich O., Konovalova T., Osintseva L. Correlation of the iron level in the bristles of Kemerovo pigs with macro- and essential microelements. BIO Web of Conferences; Les Ulis, 2021; 36: https://doi.org/10.1051/bioconf/20213606032

61. Barakova N. V., Chelombitkin M. A., Sergacheva E. S. Methodology for the development of functional foods enriched with micronutrients. American Institute of Physics Conference Proceedings. 2022; 2390: 030005. https://doi.org/10.1063/5.0070151

62. Toosi S., Behravan J. Osteogenesis and bone remodeling: A focus on growth factors and bioactive peptides. BioFactors. 2020; 46: 326–340. https://doi.org/10.1002/biof.1598

63. Beil F. T., Seitz S., Priemel M., Barvencik F. Eppendorf Pathophysiology and Pathomorphology of Osteoporosis. Europ. J. Trauma Emerg. Surg. 2008; 34 (6): 527–534. https://doi.org/10.1007/s00068-008-8201-y

64. Jessica D., Hathaway-Schrader, Chad M. Novince. Maintaining homeostatic control of periodontal bone tissue. Periodontology. 2000. 2021; 86 (1): 157–187. https://doi.org/10.1111/prd.12368

65. Tateiwa D., Yoshikawa H., Kaito T. Cartilage and Bone Destruction in Arthritis: Pathogenesis and Treatment Strategy: A Literature Review. Cells. 2019; 8 (8): 818. https://doi.org/10.3390/cells8080818

66. Zupan J., Tang D., Heinz O., Darja R., Presen M. Bone-Marrow-Derived. Mesenchymal Stromal Cells: From Basic Biology to Applications in Bone Tissue Engineering and Bone Regeneration // In: Cell Engineering and Regeneration: 139–192. https://doi.org/10.1007/978-3-319-08831-0_7

67. Xu F., Teitelbaum S. Osteoclasts: New Insights. Bone Res. 2013; 1: 11–26. https://doi.org/10.4248/BR201301003

68. Ikebuchi Y., Aoki S., Honma M. et al. Coupling of bone resorption and formation by RANKL reverse signalling. Nature. 2018; 561: 195–200. https://doi.org/10.1038/s41586-018-0482-7

69. Cawley K. M., Cecile N., Guha A. G., MacLeod R. S., Xiong J., Gubrij I., Liu Y., Mulkey R., Palmieri M., Thostenson J. D., Goellner J. J., O′Brien C. A. Local Production of Osteoprotegerin by Osteoblasts Suppresses Bone Resorption. Cell Reports. 2020; 32 (10): 108052. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2020.108052

70. Mehta P., Porter J. C., Manson J. J., Isaacs J. D., Openshaw P. J. M., McInnes I. B., Summers C., Chambers R. C. Therapeutic blockade of granulocyte macrophage colony-stimulating factor in COVID-19-associated hyperinflammation: challenges and opportunities. Lancet Respir. Med. 2020; 8 (8): 822–830. https://doi.org/10.1016/S2213-2600(20)30267-8

71. Jang H.-D., Kim E.-H., Lee J. C., Choi S.-W., Kim K., Shin B.-J. Current Concepts in the Management of Osteoporotic Vertebral Fractures: A Narrative Review. Asian Spine J. 2020; 14 (6): 898–909. https://doi.org/10.31616/asj.2020.0594

72. Nishida D., Arai A., Zhao L. et al. RANKL/OPG ratio regulates odontoclastogenesis in damaged dental pulp. Scientif. Reports. 2021; 11: 4575. https://doi.org/10.1038/s41598-021-84354-y

73. Rauner M., Baschan, U., Roetto A. et al. Transferrin receptor 2 controls bone mass and pathological bone formation via BMP and Wnt signalling. Nat. Metab. 2019; 1: 111–124. https://doi.org/10.1038/s42255-018-0005-8

74. Heinemann C., Heinemann S., Rößler S., Kruppke B., Wiesmann H.-P., Hanke T. Organically modifi ed hydroxyapatite (ormoHAP) nanospheres stimulate the differentiation of osteoblast and osteoclast precursors: a co-culture study. Biomed. Materials. 2019; 14 (3): https://doi.org/10.1088/1748-605X/ab0fad

75. Kanzaki H., Makihira S., Suzuki M., Ishii T., Movila A., Hirschfeld J., Mawardi H., Lin X., Han X., Taubman M. A., Kawai T. Soluble RANKL Cleaved from Activated Lymphocytes by TNF-α–Converting Enzyme Contributes to Osteoclastogenesis in Periodontitis. J. Immunol. 2016; 197 (10): 3871–3883. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1601114

76. Tsourdi E., Langdahl B., Cohen-Solal M., Aubry-Rozier B., Eriksen E. F., Guañabens N., Obermayer-Pietsch B., Ralston S. H., Eastell R., Zillikens M. C. Discontinuation of Denosumab therapy for osteoporosis: A systematic review and position statement by ECTS. Bone. 2017; 105: 1–17. https://doi.org/10.1016/j.bone.2017.08.003

77. Richter E., Ventz K., Harms M., Mostertz J., Hochgräfe F. Induction of Macrophage Function in Human THP-1 Cells Is Associated with Rewiring of MAPK Signaling and Activation of MAP3K7 (TAK1) Protein Kinase. Front. Cell Developm. Biol. 2016; 4: https://doi.org/10.3389/fcell.2016.00021

78. Kim H. N., Ponte F., Nookaew I. et al. Estrogens decrease osteoclast number by attenuating mitochondria oxidative phosphorylation and ATP production in early osteoclast precursors. Scientif. Reports. 2020; 10: 11933. https://doi.org/10.1038/s41598-020-68890-7

79. Razzokova Sh.B., Anvarova M. A. Features of the Course and Treatment of Aggressive Forms of Paradontitis. Texas J. Med. Sci. 2021; 1 (1): 76–82.

80. Ohtani M., Ohtani M. The preventive and therapeutic application of garlic and other plant ingredients in the treatment of periodontal diseases (Review). Exper. Therapeut. Med. 2020; 19: 1507–1510. https://doi.org/10.3892/etm.2019.8382

81. Chen X., Wang Z., Duan N., Zhu G., Schwarz E. M., Xie C. Osteoblast–osteoclast interactions. Connect. Tiss. Res. 2018: 59 (2): 99–107. https://doi.org/10.1080/03008207.2017.1290085

82. Капустина Н. В., Смоленский А. В., Сутормин Ю. Б. Опыт применения БАД Мицеллат-Актив у пациентов с переломами костей верхней конечности. Рус. мед. журн. 2016; 20: 1393–1396.

83. Филимонова Г. Н., Щудло Н. А., Марченкова О. Л. и др. Гистологические изменения передней большеберцовой мышцы при заживлении оскольчатого перелома голени собак в условиях применения препарата «Мицеллат» // В сб.: Илизаровские чтения: Материалы Всерос. научн.-практич. конф. Курган; 2010: 92–93.

84. Марченкова Л. О., Степанов М. А., Горбач Е. Н. и др. Динамика заживления диафизарных оскольчатых переломов болшеберцовых костей собак в условиях чрескостного остеосинтеза и применения препарата «Мицеллат» // В сб.: Российский конгресс ASAMI: Материалы. Курган; 2009: 92–93.

85. Ступина Т. А., Петровская Н. В., Марченкова Л. О. Оценка состояния суставного хряща при лечении оскольчатых переломов голени в условиях чрескостного остеосинтеза и применения препарата «Мицеллат» // В сб.: Илизаровские чтения: Материалы Всерос. научн.-практ. конф. Курган; 2010: 342–343.

86. Loi F., Cordova L. A., Pajarinen J., Lin T. H., Yao Z., Goodman S. B. Inflammation, fracture and bone repair. Bone. 2016; 86: 119–130. https://doi.org/10.1016/j.bone.2016.02.020

87. Стогов М. В., Горбач Е. Н., Степанов М. А., Тушина Н. В. Применение кальция в мицеллярной форме для ускорения репарации кости после переломов. Микроэлементы в медицине. 2017; 18 (4): 30–35. [Stogov M. V., Gorbach E. N., Stepanov M. A., Tushina N. V. The use of calcium in micellar form to accelerate bone repair after fractures. Trace Elemen. Med. 2017; 18 (4): 30–35 (in russ.)]. https://doi.org/https://doi.org/10.19112/2413-6174-2017-18-4-30-35

88. Sheweita S. A., Khoshhal K. I. Calcium Metabolism and Oxidative Stress in Bone Fractures: Role of Antioxidants. Curr. Drug. Metab. 2007; 8(5): 519–525. https://doi.org/https://doi.org/10.2174/138920007780866852

89. Оноприенко Г. А., Волошин В. П. Современные концепции процессов физиологического и репаративного остеогенеза. Альманах клин. мед. 2017; 2.

90. Díaz-García C. M., Meyer D. J., Nathwani N., Rahman M., Martínez-François J. R., Yellen G. The distinct roles of calcium in rapid control of neuronal glycolysis and the tricarboxylic acid cycle. eLife. 2021; 10: e64821 https://doi.org/10.7554/eLife.64821

91. Huang Z. W., Cai H., Tan H. W-S. Enhanced metabolic activities for ATP production and elevated metabolic flux via pentose phosphate pathway contribute for better CIK cells expansion. Cell Proliferat. 2019; 52: e12594. https://doi.org/10.1111/cpr.12594

92. Матюхин В. А., Разумов А. Н. Экологическая физиология человека и восстановительная медицина. М.: Медицина; 2009; 424 с.