Изменение функциональной активности фибробластов у пациентов, перенесших коронавирусную инфекцию (в анамнезе SARS-CoV-2)

Введение. В генезе формирования соматической дисфункции ведущая роль отводится адаптационным реакциям со стороны организма в целом и соединительной ткани в частности. Основными клетками соединительной ткани являются фибробласты, играющие важную роль в формировании структурно-функциональных характеристик соединительной ткани. Существует мнение, что после перенесенной коронавирусной инфекции изменяется адаптационная активность фибробластов в ответ на внешние воздействия.

Цель исследования — изучить изменение функциональной активности фибробластов в процессе моделируемого компрессионного воздействия на культуру фибробластов, полученную от пациентов, перенесших коронавирусную инфекцию за 3–6 мес до эксперимента.

Материалы и методы. В условиях эксперимента (in vitro) моделировали условия компрессии в отношении культуры фибробластов, взятых у пациентов после перенесённой коронавирусной инфекции (в анамнезе SARS-CoV-2) и у пациентов, не имевших ее в анамнезе.

Результаты. В условиях эксперимента установлено, что фибробласты пациентов, перенёсших коронавирусную инфекцию, обладают изменённой функциональной активностью, проявляющейся снижением выделяемых гликозаминогликанов, эластина и коллагена в ответ на моделирование in vitro фактора компрессии.

Заключение. Установленная реакция фибробластов на компрессию позволяет обосновать необходимость устранения этого фактора в рамках остеопатической коррекции у пациентов, перенёсших коронавирусную инфекцию, в процессе лечения и реабилитации.

1. Омельяненко Н. П., Слуцкиий Л. И. Соединительная ткань: гистофизиология и биохимия (в 2-х т.). М.: Известия; 2009; 638 c.

2. Бозо И. Я., Деев Р. В., Пинаев Г. П. Фибробласт — специализированная клетка или функциональное состояние клеток мезенхимного происхождения? Цитология. 2010; 52 (2): 99–109.

3. Аптекарь И. А., Костоломова Е. Г., Суховей Ю. Г. Изменение функциональной активности фибробластов в процессе моделирования компрессии, гиперкапнии и гипоксии. Рос. остеопат. журн. 2019; 1–2: 72–84.

4. Sorrell M., Caplan A. Fibroblasts — a diverse population at the center of it all. Int. Rev. Cell. Molec. Biol. 2009; 276: 161–214.

5. Кудрявцев И. В., Хайдуков С. В., Зурочка А. В., Черешнев В. А. Применение метода проточной цитофлюориметрии для оценки пролиферативной активности клеток в медико-биологических исследованиях. Рос. иммунол. журн. 2012; 6 (14), (3–1): 21–40.

6. Адамс Р. Методы культуры клеток для биохимиков. М.: Мир; 1983; 263 с. [Adams R. L. P. Cell culture for biochemists. M.: Mir; 1983; 263 p. (in russ.)].

7. Бочков Н. П. Цитогенетический контроль безопасности стволовых клеток // В сб.: Стволовые клетки: законодательство, исследования и инновации. Международные перспективы сотрудничества. М.: Британский Совет: Посольство Великобритании в РФ; 2007. http://www.cbio.ru/modules/mydownloads/visit.php?lid=73

8. Мохов Д. Е., Белаш В. О., Аптекарь И. А., Ненашкина Э. Н., Потехина Ю. П., Трегубова Е. С., Беляев А. Ф. Cоматическая дисфункция: Клинические рекомендации 2023. Рос. остеопат. журн. 2023; 2: 8–90. https://doi.org/10.32885/2220-0975-2023-2-8-90

9. Аптекарь И. А. Принципы и методы остеопатии. Часть 1. Биомеханическиий метод: Учеб. пособие. Тюмень: Тюменский дом печати; 2020; 139 с.

10. Мохов Д. Е., Аптекарь И. А., Белаш В. О., Литвинов И. А., Могельницкиий А. С., Потехина Ю. П., Тарасов Н. А., Тарасова В. В., Трегубова Е. С., Устинов А. В. Основы остеопатии: Учебник для ординаторов. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2020; 400 с.